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💉 うさぎの鎮静・麻酔プロトコル

Rabbit — 8プロトコル

概要：ウサギの麻酔死亡率は犬猫に比べ高い（健康個体で約1.4%、疾患個体で約7.4%）。気管挿管が困難（盲目挿管 or V-gel使用）。呼吸停止しやすく、覚醒が遅い。必ず術前の完全な身体検査（特に呼吸器状態）を実施。
⏱ 絶食・絶水：絶食不要（ウサギは嘔吐できない）。ただし、口腔内の食物を除去。絶水も不要。長時間絶食はGI stasisリスク。
鎮静前投薬導入維持局所・区域麻酔モニタリング覚醒緊急対応

鎮静 Sedation

鎮静（検査・軽処置） 低リスク
薬品用量経路備考
ミダゾラム＋ブトルファノール 0.5-1.0 mg/kg + 0.3-0.5 mg/kg IM/SC/IN 安全性が高い。鼻腔内（IN）投与も有効（ストレス軽減）。拮抗可能。
デクスメデトミジン＋ミダゾラム 50-100 μg/kg + 0.5 mg/kg IM/SC より深い鎮静。徐脈に注意。アティパメゾールで拮抗可能。
メデトミジン経鼻噴霧（MADデバイス） 200-500 μg/kg IN (mucosal atomization device) Wei et al.(2023, Yamashita lab)により日本白色ウサギでの経鼻メデトミジンの鎮静効果が確認。MAD（粘膜噴霧デバイス）使用で注射なしの鎮静が可能。保定ストレスの大幅な軽減。最大投与容量はWei et al.(2022)で評価済み。
アルファキサロン経鼻噴霧 2-4 mg/kg IN (mucosal atomization device) Wei et al.(2023, Yamashita lab)により日本白色ウサギでの経鼻アルファキサロンの鎮静・心肺への影響が評価。注射不要で低ストレス。
📝 ウサギは保定ストレスで死亡することがある。優しく扱い、後肢を必ずサポート。仰臥位（トランス状態）は呼吸抑制リスクあり。経鼻投与（MADデバイス）は注射ストレスを回避でき、近年注目されている。
📚 参考文献
  • Wei Y, Chen IY, Tamogi H, et al. The sedative effect of intranasal administration of medetomidine using a mucosal atomization device in Japanese White rabbits. J Vet Med Sci. 2023;85(4):471-478.
  • Wei Y, Nakagawa M, Chen IY, et al. Sedative and cardiorespiratory effects of intranasal atomized alfaxalone in Japanese White rabbits. Vet Anaesth Analg. 2023;50(3):255-262.
  • Wei Y, Hori A, Chen IY, et al. Maximum volume of nasal administration using a mucosal atomization device without aspiration in Japanese White rabbits. J Vet Med Sci. 2022;84(6):792-798.
  • Ishikawa Y, Sakata H, Tachibana Y, et al. Sedative and physiological effects of low-dose intramuscular alfaxalone in rabbits. J Vet Med Sci. 2019;81(6):851-856.

前投薬 Premedication

前投薬 低リスク
薬品用量経路備考
ミダゾラム＋ブプレノルフィン 0.5-1 mg/kg + 0.02-0.05 mg/kg IM/SC/IN 安全性が高い。鼻腔内（IN）投与も有効（ストレス軽減）。ブプレノルフィンは長時間鎮痛で術後管理に有利。
デクスメデトミジン＋ブトルファノール 50-100 µg/kg + 0.3-0.5 mg/kg IM/SC より深い鎮静。IV確保が容易になる。アティパメゾールで拮抗可。アトロピナーゼ産生個体（約30%）ではアトロピンが効きにくい→グリコピロレートを検討。
📝 ウサギは絶食不要（嘔吐できない）。長時間絶食はGI stasisリスク。アトロピナーゼ（ウサギの約30%が産生）に注意：抗コリン薬はグリコピロレート0.01-0.02 mg/kg SC/IMを使用。
📚 参考文献
  • Varga M. Textbook of Rabbit Medicine. 2nd ed. Butterworth-Heinemann; 2014.
  • Grint NJ, Murison PJ. A comparison of ketamine-midazolam and ketamine-medetomidine combinations for induction of anaesthesia in rabbits. Vet Anaesth Analg. 2008;35(2):113-121.

導入 Induction

前投薬＋導入 中リスク
薬品用量経路備考
ケタミン＋メデトミジン＋ブトルファノール 15 mg/kg + 0.25 mg/kg + 0.3 mg/kg IM/SC IM投与で導入可能。気管挿管を行い吸入麻酔に移行。アティパメゾールで部分拮抗可。
アルファキサロン 2-3 mg/kg IV / 3-5 mg/kg IM IV/IM IM投与可能で静脈確保困難なウサギに便利。注射量がやや多い。
プロポフォール 3-6 mg/kg IV (耳静脈) 耳介辺縁静脈からのIV投与。EMLAクリーム事前塗布で穿刺を容易に。
📝 気管挿管はサイズ2.0-4.0 ETチューブ。盲目挿管（呼吸音聴取）、V-gel（声門上気道デバイス）、内視鏡ガイドが選択肢。V-gelはウサギ用に設計されており推奨。
📚 参考文献
  • Schnellbacher RW, Divers SJ, Comolli JR, et al. Effects of inhalant anesthetics on heart rate and body temperature in the domestic rabbit (Oryctolagus cuniculus). Vet Anaesth Analg. 2013;40(6):587-596.
  • Flecknell PA. Laboratory Animal Anaesthesia. 4th ed. Academic Press; 2015.

維持 Maintenance

維持（吸入麻酔） 中リスク
薬品用量経路備考
イソフルラン MAC 2.05%（ウサギ） Inhalation ウサギのMACは犬猫より高い。呼吸抑制に注意（無呼吸になりやすい）。IPPV準備。
セボフルラン MAC 3.7%（ウサギ） Inhalation 覚醒が速い。マスク導入にも使用可能。
📝 ウサギの維持輸液: 5-10 mL/kg/hr。低体温防止を徹底（加温パッド、温風ブランケット必須）。呼吸数のモニタリングが重要。

局所・区域麻酔 Local/Regional

局所麻酔 低リスク
薬品用量経路備考
リドカイン Max 3 mg/kg Local infiltration 最大用量は犬猫より低い。皮膚縫合、去勢時の精巣内ブロック。
ブピバカイン Max 1 mg/kg Local infiltration 術後鎮痛に有効。切開部位への浸潤。
EMLAクリーム Apply 30-60 min before Topical (ears) 耳静脈穿刺前に耳介に塗布。カテーテル留置を容易にする。
📝 局所麻酔は全身麻酔薬の使用量を減らし、ウサギの安全性を向上させる。

モニタリング Monitoring

モニタリング 低リスク
📝 ウサギの眼球は閉じたままでも角膜乾燥しやすい。眼軟膏を必ず塗布。眼球の位置は麻酔深度の指標にはならない。

覚醒 Recovery

覚醒・回復 中リスク
薬品用量経路備考
アティパメゾール 1 mg/kg IM/SC メデトミジン/デクスメデトミジンの拮抗。投与後の覚醒促進。
📝 覚醒後すぐに乾草・水を提供（GI stasis予防）。術後鎮痛: メロキシカム0.3-0.5 mg/kg SC/PO q24h。腸管運動促進を確認。覚醒に時間がかかる場合は体温チェック。

緊急対応 Emergency

緊急対応 高リスク
薬品用量経路備考
アトロピン 0.05 mg/kg IV/IM 約30%のウサギはアトロピナーゼを持ち、効果が減弱。効果不十分ならグリコピロレート使用。
グリコピロレート 0.01-0.02 mg/kg IV/IM アトロピナーゼ陽性のウサギにはグリコピロレートが推奨。
エピネフリン 0.01 mg/kg IV/IO CPA時。骨髄内（IO: 脛骨近位端）投与も検討。
ドキサプラム 2-5 mg/kg IV 呼吸停止時の呼吸刺激。即効性。
📝 ウサギの心停止時はまず100% O2投与＋胸骨圧迫。エピネフリンは3-5分毎。体温が下がっている場合は積極的加温。

📚 参考文献（うさぎ全般）

  • Varga M. Textbook of Rabbit Medicine. 2nd ed. Butterworth-Heinemann; 2014.
  • Flecknell PA. Laboratory Animal Anaesthesia. 4th ed. Academic Press; 2015.
  • Grint NJ, Murison PJ. A comparison of ketamine-midazolam and ketamine-medetomidine combinations for induction of anaesthesia in rabbits. Vet Anaesth Analg. 2008;35(2):113-121.
  • Schnellbacher RW, Divers SJ, Comolli JR, et al. Effects of inhalant anesthetics on heart rate and body temperature in the domestic rabbit (Oryctolagus cuniculus). Vet Anaesth Analg. 2013;40(6):587-596.
  • Longley LA. Anaesthesia of Exotic Pets. Saunders Elsevier; 2008.
  • Quesenberry KE, Orcutt CJ, Mans C, Carpenter JW, eds. Ferrets, Rabbits, and Rodents: Clinical Medicine and Surgery. 4th ed. Elsevier; 2020.

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